Sevofluorano por Vía Intravenosa en Felinos

 

*Lucioni, Patricio Abel; ** Faure, Ivette Eleonora; ***Mele, Esteban

*Veterinario (U.B.A.), Profesional Independiente, Clínica y Anestesiología en pequeños animales
** Veterinario (U.B.A.), Profesional Independiente, Clínica y Anestesiología en pequeños animales
I*** Veterinario (U.B.A), Medico de Planta, Unidad de cirugía de pequeños Animales, Hospital escuela Fac. Cs. Vet. UBA. Dpto. Docencia, ICBME, Hospital Italiano.

Resumen

El objetivo del presente trabajo es evaluar el uso del sevofluorano por vía intravenosa para el mantenimiento anestésico en felinos.
Fueron anestesiados 14 felinos, los cuales iban a ser intervenidos quirúrgicamente.
Durante el procedimiento se evaluó la analgesia, estabilidad cardiovascular y velocidad de recuperación.
Todos los animales fueron premedicados para facilitar el manejo con acepromacina y meperidina a una dosis de 0,05 mg/kg y 5 mg/kg respectivamente por vía intramuscular. La inducción fue realizada por vía intravenosa con propofol y midazolam. La dosis de propofol usada fue de 2 mg/Kg. y el midazolam a una dosis de 0,25 mg/kg. Para lograr una adecuada relajación muscular se administró rocuronio a una dosis de 0,33mg/Kg.
El mantenimiento anestésico se llevo a cabo mediante la infusión intravenosa continua de sevofluorano y se utilizo un circuito de anestesia circular cerrado donde el flujo de gas fresco estaba dado por el consumo metabólico de oxígeno del paciente. Para reducir la CAM del sevofluorano se administró una infusión continua de xilacina al 0,1% a una dosis de 0,1 mg/Kg./hora mediante una bomba de infusión a jeringa.

Introducción

Circuitos cerrados

La utilización de circuitos cerrados de anestesia tiene como principal ventaja la disminución del consumo de anestésicos pudiendo utilizar anestésicos de última generación con una reducción sustancial de los costos. También es de destacar la disminución de la contaminación del ambiente quirúrgico con las posibles secuelas a largo plazo sobre el personal del quirófano.
Otro punto importante a tener en cuenta es la menor pérdida de temperatura con la utilización de circuitos cerrados respecto de los abiertos y semicerrados, con las grandes ventajas que esto presenta para el animal, en particular en cirugías de larga duración.
En dichos sistemas el aporte de oxígeno y de vapor anestésico es dependiente del consumo de oxígeno y de la captación del anestésico por el paciente. (1)

Sevofluorano

Es un anestésico volátil con muy baja solubilidad en sangre presentando un bajo coeficiente partición sangre/gas a 37 °C (0.60) lo que permite una rápida impregnación de la droga en el sistema nervioso central y una rápida recuperación al suspender la administración y abrir el circuito.
La CAM para el sevofluorano en los felinos es de 2,58. La CAM quirúrgica se calcula para todas las especies multiplicando la CAM por 1,3. Esto da como resultado que la CAM quirúrgica en los felino es de 3,35.
Existe abundante bibliografía que evidencia la disminución de la CAM de hasta un 70 % al administrar opioides, tranquilizantes mayores y agonistas alfa2 en la premedicación o durante el procedimiento anestésico. (2)

Formas de administración

El sevofluorano es administrado mediante el uso de vaporizadores calibrados específicamente para esta droga, teniendo que brindar un flujo de gas fresco de al menos 0,5 litros/min. para garantizar una correcta vaporización.
Una alternativa para reducir la cantidad de droga a utilizar es trabajar con circuitos totalmente cerrados realizando una anestesia cuantitativa mediante el método de la adición volumétrica, donde se inyecta en la vía inspiratoria o espiratoria una dosis predeterminada del anestésico volátil seleccionado.
La alternativa propuesta en el presente trabajo, es la administración del sevofluorano por vía intravenosa.
El volumen y la velocidad de infusión de la droga pueden observarse en el cuadro. Los mismos fueron calculados teniendo en cuenta el volumen total del sistema y la velocidad de captación de la droga por el organismo según la ecuación propuesta por LOWE. (3)

Materiales y métodos

Fueron anestesiados 14 felinos los cuales iban a ser sometidos a diversos procedimientos quirúrgicos. Todos se encontraban clínicamente sanos y fueron clasificados como ASA1. Sus edades estaban comprendidas entre los 7 meses y los 8 años de edad. De los 14 animales, 10 fueron hembras y 4 machos.
El 100% de los animales fueron premedicados con acepromacina a una dosis de 0,05 mg/kg, atropina 0,02 mg/kg y meperidina 5 mg/kg por vía intramuscular logrando una sedación moderada que permitió una correcta cateterización venosa. La inducción fue realizada con propofol a una dosis de 2 mg/kg más midazolam a una dosis de 0,25 mg/kg por vía intravenosa. Fue utilizado rocuronio a una dosis de 0.33 mg/kg como relajante neuromuscular para facilitar la intubación y el procedimiento quirúrgico.
El sevofluorano fue administrado en la vía venosa mediante una bomba de infusión a jeringa marca ATOM según el esquema propuesto (ver cuadro).

Bomba de infusión ATOM

Como coadyuvante de la anestesia fue administrada una solución de xilacina al 0,1%, a una dosis de 0,1 mg/kg/min en los primeros 10 (diez) minutos para impregnación de la misma, continuando a una dosis de mantenimiento de 0,1mg/kg/hora. La xilacina fue administrada por una bomba de infusión a jeringa MEDEX 2010i.

Bomba de infusión Medex 2010 i

Se administró una solucion de Ringer con lactato a razón de 10 ml/kg/hora para mantenimiento con una bomba de infusión ABBOTT LIFE CARE MODEL 4.

Bomba de infusión Abbot

El circuito anestésico utilizado se mantuvo totalmente cerrado. El oxígeno aportado al sistema fue calculado según el consumo metabólico del mismo por el paciente (4,4 a 6,6 ml/kg/min). (4)
Los pacientes se mantuvieron ventilados en forma asistida o controlada según necesidad, a una frecuencia de 12 movimientos respiratorios por minuto
Para la reducción de la formación del Componente A fue utilizada la cal sodada SPHERASORB de INTERSURGICAL, la cual reduce en forma sustancial la formación del mismo dentro del circuito.

Se realizó monitoreo cardíaco de la NIBP (presión arterial no invasiva), saturación de oxígeno, temperatura corporal central y posición del globo ocular como predictivos de la estabilidad cardiovascular, plano anestésico y presencia o ausencia de dolor.

Oxímetro

Fue evaluado el tiempo transcurrido desde la apertura del sistema hasta la extubación y presencia de decúbito esternal.

Resultados

Todos los pacientes anestesiados tuvieron una inducción suave y sin excitación. La intubación endotraqueal no presentó dificultad alguna.
Se observó una FC (frecuencia cardíaca) promedio de 132 latidos por minuto con un máximo de 177 y un mínimo de 77. La PAS (presión arterial sistólica) presentó un promedio de 86 mm Hg con un máximo de 129 y un mínimo de 62. La PAD (presión arterial diastólica) presentó un promedio de 39 mm Hg con un máximo de 108 y un mínimo de 21. La PAM (presión arterial media) presentó un promedio de 62 mm Hg con un máximo de 113 y un mínimo de 43.
Las FC y presiones arteriales máximas se evidenciaron antes de la inducción. Las FC y presiones arteriales mínimas. fueron evidenciadas entre el minuto 10 y 20 de comenzado el acto anestésico, coincidiendo con el plano anestésico más profundo.
No hubo evidencias de dolor en ninguno de los casos a pesar de fuertes estímulos quirúrgicos.
El tiempo de extubación promedio desde la apertura del circuito fue de 13 minutos con un máx. de 17 y un mín. de 7 minutos.
El tiempo en mantener el decúbito esternal fue de 27 minutos en promedio, con un máximo de 35 y un mínimo. de 23 minutos.

CONCLUSIÓN

Hemos observado que es factible realizar el mantenimiento anestésico en felinos mediante la administración de sevofluorano por vía intravenosa en un circuito totalmente cerrado.
La estabilidad hemodinámica es aceptable y segura, y el grado de analgesia logrado es óptimo.
El despertar es suave y rápido.
Debido a la escasa cantidad de casos evaluados, es una técnica anestésica que debe seguir siendo estudiada.

El siguiente cuadro fue adaptado de un estudio (no publicado) realizado por el autor sobre 172 caninos anestesiados con la misma técnica en el periodo 2003-2006:

Peso	Dosis total 10 minutos	Unidad dosis	Dosis/hora hasta los 9 min	Dosis/hora minuto 9 al 36	Dosis/hora miuto 37 al 64	Dosis/hora minuto 64 al 100
0	0.13	0.03	0.8	0.22	0.14	0.11
0.5	0.15	0.04	0.9	0.25	0.17	0.13
1	0.18	0.04	1.1	0.29	0.20	0.15
1.5	0.20	0.05	1.2	0.33	0.22	0.17
2	0.22	0.06	1.3	0.37	0.25	0.18
2.5	0.24	0.06	1.5	0.41	0.27	0.20
3	0.27	0.07	1.6	0.44	0.30	0.22
3.5	0.29	0.07	1.7	0.48	0.32	0.24
4	0.31	0.08	1.9	0.52	0.35	0.26
4.5	0.33	0.08	2.0	0.56	0.37	0.28
5	0.36	0.09	2.1	0.60	0.40	0.30
5.5	0.38	0.10	2.3	0.63	0.42	0.32
6	0.40	0.10	2.4	0.67	0.45	0.34
6.5	0.43	0.11	2.6	0.71	0.47	0.35
7	0.45	0.11	2.7	0.75	0.50	0.37
7.5	0.47	0.12	2.8	0.79	0.52	0.39
8	0.49	0.12	3.0	0.82	0.55	0.41
8.5	0.52	0.13	3.1	0.86	0.57	0.43
9	0.54	0.13	3.2	0.90	0.60	0.45
9.5	0.56	0.14	3.4	0.94	0.62	0.47
10	0.59	0.15	3.5	0.98	0.65	0.49

 

REFERENCIAS