EVALUACIÓN, CRIOPRESERVACIÓN DE SEMEN E INSEMINACIÓN ARTIFICIAL EN EL GATO DOMÉSTICO

 

 

Stornelli, M.C1.; Stornelli, M.A1

1-Cátedra de Reproducción Animal. Laboratorio Central. Fac. Cs. Vet. U.N.L.P. Calle 60 y 118. La Plata (1900). Bs. As. Argentina.

E-mail: astornel@fcv.medvet.unlp.edu.ar

 

Introducción

 

La evaluación de semen en el macho reproductor es un método complementario de rutina en la evaluación del gato infértil o con enfermedad del tracto reproductivo, así como en la criopreservación de semen.

En el gato la recolección de semen puede realizarse mediante vagina artificial o electroeyaculación. El eyaculado obtenido puede utilizarse para evaluar la calidad de semen de un reproductor, criopreservación de semen o inseminación artificial (IA). La recolección de semen a partir de la vagina de la hembra luego del servicio natural, permite obtener algunos datos sobre el semen de un reproductor. Si bien esta información puede ser útil es escasa en comparación con la proporcionada por la contrastación de un eyaculado obtenido mediante vagina artificial o electroeyaculación. La recolección de espermatozoides de la cola del epidídimo es un método implementado para la criopreservación de semen pos mortem.

            La criopreservación de semen e inseminación artificial en el gato doméstico pueden utilizarse como reservorio genético y posibilidad de reproducción asistida, así como modelo experimental para felinos silvestres en vías de extinción. Los bancos de semen reducen la necesidad de machos en un plantel reproductivo y permiten preservar material genético que de otra forma se perdería. Así mismo el estudio de la reproducción de los gatos domésticos constituye un modelo experimental sumamente útil para el estudio e investigación de especies silvestres.

 

Recolección de semen

 

La electroeyaculación es el método más utilizado para la recolección de semen, sin embargo la vagina artificial puede utilizarse en algunos gatos entrenados. Otros métodos pueden ser útiles cuando no es posible aplicar los anteriormente mencionadas.

 

Obtención de semen mediante vagina artificial:

 

            Puede fabricarse una vagina artificial, seccionando y adaptando una pera de goma pequeña (como las que acoplamos a las pipetas de 1 o 2 mililitros) a un ependorf o a un tubo de pequeño calibre (15). Foto 1 y 2

La vagina debe precalentarse a 36ºC, colocarse cuando el macho realiza la monta de la hembra en celo y colectar así el eyaculado. La colecta puede realizarse sin utilizar una hembra en celo, previo entrenamiento del macho a la eyaculación mediante manipulación. Sin embargo es preciso recordar que cualquiera sea el método elegido, el animal requiere un entrenamiento previo y solo un pequeño porcentaje de los animales logra eyacular mediante la utilización de vagina artificial (2).

 

Obtención de semen mediante electroeyaculación:

 

            L a electroeyaculación permite obtener semen de todos los animales que posean la vía neurológica implicada intacta. Sin embargo, una limitante es la necesidad de someter al animal a una anestesia general a fin de evitar las molestias que este método produce sobre el mismo (6)

            Para la realización de esta técnica debe utilizarse un electroeyaculador, el cual consta de un vástago (fuente de electrodos) y una fuente de voltaje (foto 3). El vástago es introducido entre 7 y 9 centímetros en el recto  con los electrodos ubicados hacia ventral. El pene es exteriorizado y se lo coloca dentro de un tubo. Se necesitan unos 80 estímulos de entre 2 y 5 voltios para lograr un eyaculado. Los estímulos se dividen en tres series con un descanso de 2 a 3 minutos, entre cada serie. Con cada estímulo ocurre una extensión rígida de los miembros posteriores, la cual indica que el estímulo ha sido adecuado (2, 15). Se ha demostrado que el voltaje de estimulación afecta la osmolalidad y pH del semen obtenido por este método (9). También se ha comprobado que la electroeyaculación permite obtener un eyaculado de mayor volumen pero menor concentración espermática que la vagina artificial (9).

            Este método se reserva solo para animales sanos, para los cuales el procedimiento implica un riesgo mínimo.

 

Obtención de semen mediante lavaje vaginal pos servicio:

 

Si bien este no es el método ideal para realizar una evaluación seminal, puede utilizarse cuando no es posible realizar una extracción de semen mediante vagina artificial y es riesgoso someter al animal a un protocolo anestésico o el propietario no accede al mismo.

Es preciso considerar que esta práctica es engorrosa ya que el macho debe realizar un servicio e inmediatamente después la hembra debe ser sedada para implementar un lavaje vaginal, el cual se realizará con solución salina fisiológica a 37ºC (15). Debe considerarse que los espermatozoides recolectados por este método pueden sufrir alteraciones relacionadas con la técnica de toma de muestra utilizada. El lavaje vaginal con 1 ml de solución fisiológica permite obtener entre 40 X 104 y 10 X106 espermatozoides (2, 15).

           

Recuperación de espermatozoides de la vejiga:

 

Se ha reportado que el gato eyacula entre 15 y 90 % de semen en forma retrógrada en la vejiga urinaria. Es así que la recuperación de espermatozoides de la vejiga es usado para determinar si el gato produce espermatozoides. (15)

 

Colección de semen a partir del epidídimo:

 

Pueden obtenerse espermatozoides de la cola del epidídimo luego de la castración o pos mortem. El epidídimo debe lavarse con un diluyente de semen para obtener los espermatozoides que serán posteriormente criopreservados.

            Este es un método útil y eficaz en la preservación de semen de especies silvestres cuando los animales mueren en zoológicos o reservas (3,4).

           

           

 

Evaluación de semen:

 

Volumen: el volumen del eyaculado es pequeño y varía según el método utilizado para su obtención. Cuando la recolección se realiza con vagina artificial el volumen puede alcanzar 0,12 ml, mientras que con electroeyaculación pueden obtenerse hasta 0,74 ml. El volumen eyaculado puede medirse utilizando micropipetas (9)

 

Color:  el color es blanquecino, pudiendo ser amarillo si se contamina con orina y rosado o rojizo si se contamina con sangre (10)

 

Concentración espermática: puede oscilar de 13 X106  a 153 X106 espermatozoides totales.

            La concentración espermática es mayor cuando se colecta la muestra con vagina artificial en comparación con las muestras obtenidas por electroeyaculación (1, 21). Los métodos de conteo son los usados rutinariamente en la contrastación de semen (cámara de Neubauer, cámara de Burker y contadores celulares) (2)

 

Motilidad individual: el porcentaje de motilidad progresiva se estima en platina térmica, a través de la observación de una gota de semen puro a 400 X. Se ha comunicado como normal una motilidad progresiva de entre 60 y 90 % (3, 15)

 

Morfología espermática: el espermatozoide felino mide aproximadamente 26 um de largo a diferencia del canino que mide 36 um (1, 2)

La identificación de formas anormales se realiza mediante microscopía de contraste de fase o mediante tinciones como Diff-Quik. Se ha comunicado que el semen normal posee alrededor del 70 % formas normales. Las anormalidades morfológicas que han sido identificadas son: macrocefalia, microcefalia, cabeza doble, gota citoplasmática proximal y distal, cabezas sueltas, colas enrolladas. (15).

Muchos factores influencian la morfología de los espermatozoides en el eyaculado. Se ha establecido como normospérmico al semen felino que posee más del 60% de espermatozoides normales. No se conoce la relación entre morfología espermática y fertilidad in vivo en gatos (13, 14)

Osmolalidad: es aproximadamente de 320 mOsm (16, 19)

 

PH: oscila entre 6,6 y 8,8 (16, 19)

 

Fosfatasa alcalina: el semen felino es rico en fosfatasa alcalina (16, 19)

 

Microbiología seminal: las bacterias aeróbicas aisladas a partir de eyaculados provenientes de gatos sanos incluyen: E coli, Pseudomona Aeruginosa, Proteus Mirabilis, Klebsiella SP, Streptococo y Stafilococo. Estas bacterias constituyen la flora saprofita de la uretra distal y prepucio del macho (6, 12)

 

 

 

 

 

            Criopreservación de semen felino:

 

            El semen felino puede ser almacenado por cortos períodos (24-48hs) mediante refrigeración a 4º C o por largos períodos mediante congelación. La mayoría de los estudios sobre criopreservación de semen han sido realizados in vitro. Existen muy pocas comunicaciones de preñeces logradas mediante inseminación artificial con semen refrigerado o congelado.

 

            Semen refrigerado: Se han usado, para la refrigeración de semen felino, diluyentes en base TRIS con el agregado de yema de huevo, sin embargo pocos estudios han sido realizados sobre los diferentes diluyentes que pueden usarse en este procedimiento.

La supervivencia espermática y capacidad fecundante del semen refrigerado han sido estudiadas solo in vitro. Faltan aún pruebas de campo que comprueben la capacidad fecundante del semen refrigerado a través del logro de preñeces obtenidas mediante inseminación artificial (15)

            Semen congelado: el semen felino ha sido congelado con diluyentes compuestos por trealosa, glicerol, yema de huevo y antibióticos. La congelación seminal se ha realizado en pastillas y pajuelas, lográndose mejores resultados con estas últimas (1, 2, 20).

Luego de un período de equilibración a 5º C de entre 30 y 40 minutos se realiza la congelación mediante vapores de nitrógeno líquido y posterior inmersión de las pajuelas en el mismo. Estudios más profundos sobre congelación de semen felino son necesarios para optimizar el método (2, 15)

 

Inseminación artificial

 

La inseminación artificial (IA) en los gatos domésticos ha sido implementada principalmente como parte de proyectos de investigación, donde el gato es usado como modelo experimental para el estudio de felinos salvajes. Las técnicas de IA y conservación de semen pueden se una herramienta valiosa en los programas reproductivos felinos. El semen congelado puede utilizarse como reservorio de material genético y puede emplearse luego de que un animal haya sido castrado o haya muerto. El sitio en que se deposita el semen, el momento en que se realiza la inseminación y el número de espermatozoides mótiles y viables son factores importantes que influencian la tasa de concepción (22, 10)

            En la hembra felina la ovulación es inducida por el estímulo coital, el cual desencadena la liberación de GnRH desde el hipotálamo provocando la liberación de LH a partir de la pituitaria (11, 18). Múltiples coitos son necesarios para que exista una alta probabilidad de que la hembra ovule. Entre 26 y 30 hs luego de la liberación de LH (si las concentraciones séricas de la misma son suficientes) ocurre la ovulación de todos los oocitos maduros (10, 15). Se estima que en un pequeño porcentaje de hembras (35%) ocurre ovulación espontánea (10). En relación a la fisiología felina, para realizar IA debe inducirse la ovulación. Este evento fisiológico puede provocarse mediante la administración de gonadotrofina coriónica humana (hCG), la cual posee actividad LH (2, 18) Ocurre la ovulación en la mayoría de las hembras, cuando se administran 100 UI de hCG intramuscular el tercer día del estro. Una alternativa es el uso de 25 ug de GnRH, hormona liberadora de gonadotrofina, por vía intramuscular (5, 7, 8, 17).

Es importante destacar que se encuentra en amplio desarrollo mediante continuas investigaciones un protocolo eficiente para la inducción hormonal del estro y ovulación con mínimos efectos colaterales.

 

           

Inseminación artificial con semen fresco:

 

Se han comunicado preñeces con IA vaginal o uterina con semen fresco. El semen, debido al escaso volumen eyaculado, puede diluirse con solución fisiológica o un diluyente en base Tris. Esto permite un mejor manejo del eyaculado, el cual será depositado en la vagina 24 hs después de la ovulación o en el útero 30 a 50 minutos luego de ocurrida la misma (2, 22)

Para la IA vaginal puede utilizarse una sonda tomcat, la cual será introducida en la vagina, la mayoría de las veces, sin utilización de tranquilizante. El semen será depositado en el fondo de la vagina cerca del cuello del útero (foto 4). Deben calcularse un mínimo de 80 X 106 espermatozoides para la inseminación intravaginal, lo cual es 10 veces más alto que lo necesario para la IA intrauterina. (23)

 

Inseminación artificial con semen congelado:

 

La primer comunicación de una preñez con semen congelado en gato se realiza en 1976 a partir de IA intravaginal (20)

La tasa de preñez esperada utilizando semen congelado mediante IA intravaginal es aproximadamente de 10 %. La pobre fertilidad observada cuando utilizamos semen congelado se relaciona con el daño sufrido por los espermatozoides durante el proceso de congelación y descongelación (2). El método y lugar de IA son cruciales cuando se utiliza semen congelado. La IA intrauterina permite obtener tasas de preñez superiores en comparación la IA vaginal (16)

 

Conclusiones:

 

La reproducción felina ha captado la atención de numerosos científicos en la última década. El creciente interés sobre este área del conocimiento se relaciona no solo con las implicancias que tiene sobre la medicina y reproducción del gato doméstico, sino también con la posibilidad de utilización del Felis catus como modelo para el estudio de felinos silvestres. El desarrollo de la fecundación in vitro y la transferencia embrionaria ha impulsado la actualización de conocimientos de la fisiología reproductiva felina, realizándose importantes descubrimientos lo cual ha estimulado el desarrollo de la IA y la criopreservación de semen. La difusión del conocimiento en este área, permitirá al especialista en medicina felina, incluir en su práctica diaria procedimientos nuevos relacionados con la reproducción y biotecnología.

 

 

 

Bibliografía:

 

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4) Axnér, E.; Ström-Holst, B.;  Linde-Fosberg, C. (1998) Morphology of spermatozoa in the cauda epididymis before and after electroejaculation and a comparison with ejaculated spermatozoa in the domestic cat. Theriogenology. 50: 973-979.

 

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